FL6000Pengukur fluoresensi klorofil modulasi ganda

FL6000Dual-modular chlorofluorometer adalah versi terbaru dari FL3500 dual-modular chlorofluorometer yang dirancang untuk alat penelitian ilmiah yang kuat untuk penelitian mendalam mekanisme fotosintesis pada alga mikro, klorofil atau suspensi kistis seperti alga biru-hijau atau alga hijau. Instrumen ini memiliki kontrol pengukuran saluran ganda, dapat mengontrol suhu sampel pengukuran, dan dilengkapi dengan cahaya flip tunggal (STF), dibangun dalam berbagai prosedur pengukuran yang dapat dimodifikasi oleh pengguna sendiri, dapat melakukan berbagai penelitian mekanisme yang mendalam tentang fluoresensi klorofil saat ini secara internasional. Struktur inti adalah kepala pengukuran optik yang berisi cangkir sampel standar suspensi, 3 set sumber cahaya LED dan 1 detektor sinyal dioda PIN yang dikonversi AD 1MHz / 16 bit. Keuntungan dan waktu kredit dari konversi AD dapat dikontrol melalui perangkat lunak. Detektor dapat mengukur sinyal fluoresensi klorofil dengan resolusi waktu hingga 4 µs (versi cepat adalah 1 µs).

Bidang aplikasi:

·Sifat fotosintesis tanaman dan penyaringan gangguan metabolisme

·Deteksi coercion biologis dan non-biologis

·Penelitian kemampuan atau kerentanan tanaman

·Penelitian Kaos Metabolisme

·Penelitian mekanisme kerja sistem fotosintesis

·Penelitian Strategi Respon Fotofisiologi Tanaman Terpaksa

Contoh khas:

·alga biru (bakteri biru)

·alga hijau

·Suspensi klorofil

·Suspensi kistik

·Potongan tanaman

Fitur fungsional:

·Pengukuran induksi fluoresensi klorofil bawaan, pengukuran PAM (modulasi pulsa), pengukuran dinamika fluoresensi cepat OJIP, QA - dinamika oksidasi ulang, konversi keadaan S, pemadaman fluoresensi klorofil dan sebagainya, adalah fluoresentor klorofil yang paling lengkap di dunia.

·Teknologi modulasi ganda, dapat mengukur cahaya modulasi ganda warna, dengan cahaya fotokimia modulasi dan cahaya fotokimia berterusan, dapat melakukan pengukuran STF (single-cycle flash), TTF (dual-cycle flash) dan MTF (multi-cycle flash) dan teknologi FRR khusus (Fast Repetition Rate)

·Resolusi waktu versi standar hingga 4 µs, versi cepatHingga 1 µs, adalah fluorescer klorofil dengan resolusi waktu tertinggi saat ini

·Unit kontrol adalah saluran ganda, dapat menghubungkan sensor suhu untuk kontrol suhu, menghubungkan unit pengukuran oksigen untuk pengukuran reaksi Hill, dll.

·Sensitivitas yang sangat tinggi dengan batas deteksi minimum 100ng Chla / L

·Mengukur cahaya, cahaya optik, warna dan intensitas sumber cahaya single-reflector jenuh dapat disesuaikan

·Host dilengkapi dengan layar sentuh warna untuk melihat grafik fluorescensi secara real-time

Parameter teknis:

·Prosedur eksperimental: pengukuran efek induksi fluorescensi klorofil Kautsky; PAM (modulasi pulsa)Dinamika pemadaman fluorescensipengukuran; Pengukuran dinamika fluoresensi cepat OJIP; QA – Dinamika Reoksidasi; S kondisi konversi; Induksi fluoresensi klorofil cepat

• Parameter fluoresensi:

uPAMPengukuran dinamika pemadam fluorescensi: mengukur kurva dinamika pemadam fluorescensi, dapat menghitung F₀Fm, Fv, dan F.₀’,Fm’,Fv’,QY(II),NPQ,ΦPSII,Fv/Fm,Fv’/Fm’,Rfd,qN,qP,ETRLebih dari 50 parameter fluoresensi klorofil;

uOJIPPengukuran dinamika fluoresensi cepat: mengukur kurva dinamika fluoresensi cepat OJIP, dapat menghitung F₀FJ, Fi, Fm, Fv, VJ, Vi, Fm / F₀dengan FV/F₀Fv / Fm, M0, Area, Fix Area, SM, SS, N, Phi_P₀dan psi_₀dengan Phi_E₀dengan Phi_D₀Penggunaan: Phi_Pav, ABS/RC, TR₀/ RCdan et₀/ RCdi₀/ RCLebih dari 20 parameter yang relevan;

uQAKinetika reoksidasi QA: mengukur kurva kinetik reoksidasi QA yang digunakan untuk menyesuaikan amplitudo (A1, A2, A3) dan konstanta waktu (T1, T2, T3) masing-masing dalam fase cepat, fase tengah, dan fase lambat QA-reoksidasi.

uSS-state test: mengukur kurva pengurangan fluoresensi uji S-state untuk menghitung sistem cahaya inactif II (PSII)_XJumlah pusat reaksi

uFlash Fluorescence Induction (FFL, versi cepat saja): Untuk menghitung area antena yang efektif, konektivitas antena, dll.

uMenyediakan fitur protokol khusus pengguna untuk mencapai heterogenitas antena PSII PSIIαdengan PSIIβAnalisis, PSII berfungsi area intersection antena (sPSIIPengukuran parameter lainnya (fitur khusus opsional)

uQAkurva dinamika oksidasi ulang danUji keadaan SKurva penurunan fluoresensi (Li，2010）

·Resolusi waktu (frekuensi pengambilan sampel): Detektor sensitivitas tinggi dengan resolusi waktu versi standar 4 µs dan versi cepat 1 µs

·Batas deteksi minimum: versi standar 100ng Chla / L, versi cepat 1μg Chla / L

·Unit kontrol: dilengkapi dengan layar sentuh warna untuk melihat grafik fluorescensi secara real-time

·Ruang pengukuran:

atauPengukuran kilat: cahaya merah oranye 623nm dan cahaya biru 460nm, waktu kilat 2-5µs

atauKekuatan cahaya maksimum 170.000 µmol (foton) / m².s, waktu kilat cahaya 20-50 µs

atauKekuatan cahaya maksimum 3500 µmol (foton) / m².s

atauDetektor fluoresensi: dioda fotovoltaik PIN

atauMasehiKonverter: 16bit

atauSampel tabung uji: luas dasar 10 × 10mm, volume 4ml

• Ruang pengukuran khusus (opsional): dapat menyesuaikan warna pengukuran cahaya, cahaya jenuh dan cahaya fotokimia (biru, biru, amber, dll.) dan pita deteksi (ChlA, ChlB)

• Sumber cahaya inframerah jauh (opsional): untuk mengukur F₀Panjang gelombang 730nm

·Modul pengukuran oksigen (opsional): mengukur pelepasan oksigen dari ganggang

·Kontrol suhu (opsional): Regulator suhu TR 6000, rentang 5-60 ℃, akurasi 0,1 ℃

• Pengaduran elektromagnetik (opsional): digunakan untuk mencampur sampel untuk mencegah sedimen sampel, dapat diatur secara manual atau kontrol otomatis perangkat lunak

• Antarmuka komunikasi: Serial RS232 / USB

FluorWinPerangkat lunak: menentukan atau membuat skema eksperimen, pengaturan kontrol sumber cahaya, output data, pemrosesan analitis dan tampilan grafik

Aplikasi khas:

1. Peneliti Wang Qiang dari Institut Biologi Akwatik Akademi Ilmu Pengetahuan Cina menggunakan fluoresenter klorofil FL3500 (model sebelumnya FL6000) dan sistem pelepasan panas tanaman TL untuk membuktikan bahwa stres nitrat pertama-tama mempengaruhi sisi reseptor PSII Synechocystis sp. PCC 6803 (Zhan X, et al, 2017). Penelitian dalam mekanisme fotosintesis ini sering membutuhkan kedua instrumen ini untuk diselesaikan.

2.Peneliti Pan Rong Liang dari Institut Ekologi dan Geografi Xinjiang Akademi Sains Cina dan kelompoknya menggunakan fluoresenter klorofil FL3500 (model sebelumnya FL6000) untuk melakukan penelitian toksisitas logam berat, garam, senyawa beracun, herbisida, insektisida, antibiotik dan berbagai bahan berbahaya terhadap ganggang di lingkungan. Melalui pengukuran fluoresensi klorofil, seperti pengukuran dinamika fluoresensi cepat OJIP resolusi tinggi yang unik FL3500, QA - dinamika oksidasi ulang, konversi keadaan S, mekanisme toksisitas dan dampak ekologisnya yang merusak sistem fotosintesis ganggang dengan berbagai konsentrasi dan waktu pengolahan. Saat ini, kelompok subjek Pan Liang telah menggunakan FL3500 (model sebelumnya FL6000) untuk menerbitkan lebih dari dua puluh artikel tingkat tinggi di jurnal SCI internasional dan jurnal inti domestik.

Tempat asal: Ceko

Referensi:

1. Manaa A, et al. 2019. Toleransi salinitas quinoa (Chenopodium quinoaWilld) seperti yang dinilai oleh ultrastruktur kloroplast dan kinerja fotosintetis. Botani Lingkungan dan Eksperimen 162: 103-114

2. Yu Z, et al. 2019. Sensitivitas Chlamydomonas reinhardtii terhadap stres kadmium dikaitkan dengan fototaksis. Ilmu Lingkungan: Proses & Dampak 21: 1011-1020

3. Liang Y, et al. 2019. Mekanisme molekuler aklimatasi suhu dan adaptasi pada diatom laut. Jurnal ISME, DOI: 10.1038/s41396-019-0441-9

4. Orfanidis S, et al. 2019. Memecahkan Eutrofikasi Cyanobacteria Melalui Bioteknologi. Ilmu Terapan 9(12): 2566

5. Sicora C I, et al. 2019. Peraturan fungsi PSII dalamCyanothece yangsp. ATCC 51142 selama siklus cahaya-gelap. Penelitian Fotosintesis 139(1-3): 461-473

6. Smythers A L, et al. 2019. Carakterisasi efek puisi padaChlorella vulgarisOrganisme yang tidak target. Kemosfer 219: 704-712

7. Albanese P, et al. 2018. Modulasi proteom tilakoid pada tanaman kacang polong yang ditanam pada irradiansi yang berbeda: profil proteomik kuantitatif dalam nonOrganisme model dibantu oleh integrasi data transkriptomik. Jurnal Tanaman 96(4): 786-800

8. Antal T, Konyukhov I, Volgusheva A, et al. 2018. Induksi fluoresensi klorofil dan sistem relaksasi untuk pemantauan terus menerus kapasitas fotosintesis dalam fotobioreaktor. Physiol Plantarum. DOI: 10.1111/ppl.12693

9. Antal T K, Maslakov A, Yakovleva O V, et al. 2018.Simulasi kinetik peningkatan dan kerusakan fluoresensi klorofil, dan perubahan penyerapan terkait P700 dengan menggunakan metode Monte-Carlo kinetik berbasis aturan. Penelitian fotosintesis. DOI: 10.1007 / s11120-018-0564-2

10.Biswas S, Eaton-Rye JJ, et al. 2018. PsbY diperlukan untuk mencegah kerusakan fotosistem II pada mutan PsbM-kurang dariSinekosistissp. PCC 6803. Fotosintetika, 56(1), 200–209.

11.Bonisteel E M, et al. 2018. Perbedaan spesifik strain dalam tingkat perbaikan Photosystem II pada picocyanobacteria berkorelasi dengan perbedaan tingkat protein FtsH dan pola ekspresi isoform. PLOS ONE 13(12): e0209115.

12.Fang X, et al. 2018. Respon transkriptomik dari cyanobacteria lautproklorokokusuntuk produk lysis viral. Mikrobiologi Lingkungan, doi: 10.1101/394122.

13.Kuthanová Trsková E, Belgio E, Yeates A M, et al. 2018. Sensitivitas proton antena menentukan strategi panen cahaya fotosintetik, Journal of Experimental Botany 69(18): 4483-4493